为了实现全局侧链去保护,极强腐蚀性的三氟乙酸(TFA)一直是首选试剂,因为其在断裂这些键方面的无与伦比的效率,然而,TFA的使用也存在以下一些问题:
作为一种不可回收的溶剂,被归类为“持久性化学物质”,给环境和经济带来了严重的负担。包括欧盟提议禁止全氟和多氟烷基物质(PFAS),包括TFA。
依赖于TFA敏感的保护基团在SPPS中引入了技术挑战。
疏水性基团如tBu、叔丁氧羰基(Boc)和三苯甲基(Trt)可能导致肽在合成过程中聚集,
N-甲基化肽在强酸条件下会降解,无法承受长时间的TFA暴露。
某些保护基团,如基于磺酰基的Pbf-Arg,需要延长TFA处理时间才能去除,增加了肽主链断裂的风险。
这些限制促使人们重新设计侧链保护基团,以在更温和的条件下实现选择性去除,确保多肽治疗中可持续且可行的SPPS。
介绍一种基于Fmoc/吡啶甲基(Pic)化学的新型SPPS平台,能够在温和条件下通过光催化C-杂原子键断裂实现氨基酸侧链的正交保护及其高效去除。该方法利用Pic基团作为原料来“笼络”氨基酸侧链,消除了对TFA的需求,从而为传统肽合成提供了一种环保替代方案。此外,该方法无缝整合到自动化肽合成仪中,实现了结构复杂的肽的无酸、树脂上光释放,这对传统SPPS方法来说仍然是一个挑战。该工作由上海交通大学王平教授近期在jacs上发表。
通过光氧化还原催化策略实现了各种官能团中C-杂原子键的断裂,包括重要的氨基酸构建模块。为了确定最佳解笼条件,最初使用Fmoc和吡啶甲基保护的丝氨酸构建模块(1)作为模型底物。在普通家用紧凑型荧光灯(CFL,10W)的照射下,在PBS/MeOH混合物(pH 5.0)中,以抗坏血酸作为还原剂(5.0当量)和Ru(bpy)3Cl2(PC 1,E1/2=-1.33V,1.5mol%)作为催化剂,1的解笼在20分钟内完成,以定量转化率获得所需产物。不同pH条件的筛选表明,在pH 4.0-5.0时转化率最高。相比之下,在pH 7.0或9.0时,转化受到显著抑制,表明吡啶鎓的质子化对于促进这一过程至关重要。此外,当CFL被蓝色发光二极管(LED;420nm,条目5)或绿色LED(520nm)替换时,转化部分降低,这与Ru(bpy)32+的最大吸收一致,其中心位于454nm。有趣的是,改变溶剂或还原剂对系统反应性的影响最小,这表明了该转化的稳健性。然而,当使用Eosin Y(PC 2,E1/2=-1.06V)作为催化剂时,反应受到抑制,这可能是由于其还原电位不足以引发所需的转化。相比之下,4-CzIPN(PC 3,E1/2=-1.21V)与Ru(bpy)3Cl2具有相同的光催化效果,表明在适当还原催化剂的情况下,无金属条件是可行的。对照实验表明,光催化剂、还原剂和CFL对于反应是必不可少的。
氨基酸底物范围:
接下来,将吡啶甲基基(Pic衍生)基团应用于一系列典型氨基酸构建模块。为了确保与SPPS无缝整合,这些保护基团被设计为与每种氨基酸的独特反应性相匹配。具体而言,对于天冬氨酸(5)和谷氨酸(6),采用二甲基吡啶甲基(Dmpic)保护基团,以增加位阻,防止在SPPS过程中发生天冬氨酸内酰胺化和焦谷氨酸化。同时,对于具有亲核侧链的氨基酸,包括精氨酸(7)、赖氨酸(8)、色氨酸(9)和组氨酸(10),战略性地引入了二甲基吡啶甲基氧基羰基(Dmpicoc)、吡啶甲基氧基羰基(Picoc)和二苯基吡啶甲基(Dppic)基团,以降低它们的亲核性,避免不必要的副反应。所有Fmoc/Pic保护的氨基酸(1,3-11)的合成均从商业可得的前体出发,通过两到三个步骤实现,展示了在10-200克规模上的出色可扩展性,突出了该方法在工业应用中的实际可行性。
磷酸化和非天然氨基酸:
为了进一步强调Fmoc/Pic SPPS策略的广泛适用性,将氨基酸构建模块的范围扩展到包括磷酸化和非天然氨基酸。吡啶甲基基保护基团成功应用于一系列非典型氨基酸(12-15),包括在C端或N端有修饰的氨基酸,进一步突出了Pic平台的多功能性和卓越的官能团耐受性。值得注意的是,与传统SPPS条件不同,在传统SPPS条件下,苄基保护的磷酸酯由于其较差的离去基团能力,很难被去保护,而带有Pic基团的磷酸化氨基酸在pH 4下在30分钟内经历了干净且完全的去保护,一致地获得了超过85%的分离产率(16-18)。此外,一系列C-杂原子键,包括C-O、C-N和C-S键,在这些相同的温和光氧化还原条件下被高效断裂,迅速以优异的产率获得所需的氨基酸衍生物。在所有情况下,都观察到了选择性解笼,显示出与Fmoc、苄基、苯酚和Boc基团以及酯官能团的完美兼容性,而这些在传统方法中将极具挑战性。
与传统的TFA介导的tBu型保护基团的断裂的比较:
吡啶甲基基光去保护策略具有显著优势,特别是在反应温和性和操作效率方面。在标准化光解条件下(10W CFL,20分钟,pH 5.0),所有Fmoc/Pic保护的氨基酸均实现了完全去保护,一致地获得了约90%的分离产率。至关重要的是,该方法在精氨酸去保护方面具有显著优势,这在SPPS中一直是一个持久的挑战。传统的Pbf保护精氨酸通常需要延长的TFA处理时间,常常导致肽主链断裂或降解。相比之下,Pic保护的精氨酸(7)衍生物在温和、中性和水性条件下迅速且干净地去保护。此外,对于高度亲核的残基,如半胱氨酸、酪氨酸和色氨酸,长时间暴露于TFA断裂环境中已被充分记录为会引发一系列不利的副反应,包括锍离子形成、不可逆的S-烷基化以及芳香环的酰化/烷基化。重要的是,该温和光氧化还原条件在水相介质中运行,且不产生高度亲电的中间体,如tBu阳离子,完全避免了所有这些不希望的副反应。这种显著增强的化学选择性为复杂功能肽的合成提供了明显的优势,特别是那些包含敏感或翻译后修饰残基的肽。
为了完全消除TFA的使用,采用了 Sieber 树脂来合成含有C端酰胺的肽,这允许使用甲酸来裂解完全保护的肽酰胺。在Fmoc/Pic SPPS和随后的肽从树脂释放之后,得到的Pic保护的肽在标准条件下用可见光照射,得到所需的产物。按照这个方法合成了9种含有C端酰胺的肽(19−27),得到了非常优异的产率。含有氧化敏感的蛋氨酸残基的黏液溶解剂N-乙酰精氨酸酰胺(19)可以很容易地在克级规模上使用Fmoc/Pic基SPPS平台合成,这表明了它的可扩展性和化学稳健性。值得注意的是,两种药用价值很高的肽——催产素(编号21)和特利加压素(23)——分别以52%和65%的分离产率获得。此外,在光去保护条件下,蛋氨酸保持完全完整,与传统的SPPS方法不同,传统的方法通常需要大量的硫醇类还原剂来抑制氧化降解。该方法还显示出与含有多个Pic基团的复杂肽序列的强大兼容性。例如,用于治疗骨质疏松症的药物鲑鱼降钙素(24)和抗糖尿病药物普兰林肽(26),每种都含有超过10个吡啶甲基基团,在单步全局去保护中都获得了非常优异的产率。这些例子表明,Fmoc/Pic策略完全兼容长达40个氨基酸的较长肽序列,突出了其在合成中等大小的治疗性肽中的适用性,这些肽通常合成具有挑战性。此外,肽的亲水性随着Pic的引入而显著增加,特别是对于像人类免疫缺陷病毒1蛋白酶(残基81−99)(HIV-1PR,25)这样难以合成的肽序列,与Fmoc/tBu策略相比表现出显著的优越性,以及酰基载体蛋白(ACP,27)的65−74片段,在反相HPLC中显示出缩短的保留时间(图3,插入的HPLC)。除了Sieber树脂外,其他酸敏感树脂,如2-氯三苯甲基氯化物(2-CTC)树脂,也与Fmoc/Pic SPPS策略兼容,用于合成羧酸末端肽。
最后,进一步引入了一种光可切割连接子,以实现在可见光照射下从树脂上同时释放肽和全局去保护。为此,设计了一种新型的光可切割二苯基(4-吡啶基)甲基修饰的连接子,它可以在可见光存在的情况下从树脂上释放带有C端羧酸的肽。为了实现高效的固相光解,进一步通过系统地筛选树脂和溶剂来优化反应条件。如图4A所示,以脑啡肽(28)作为模型肽,并根据2小时可见光照射后的产物纯度和切割效率来优化反应条件。对于在水性介质中表现出优越膨胀性能的Tenta Gel树脂,肽28在PBS缓冲液中获得了最高的纯度。然而,发现Tenta Gel树脂的负载量意外地低,这可能是由于在SOCl₂处理下聚乙二醇(PEG)发生了降解。相反,对于Rink酰胺-AM树脂,只有使用THF/PBS混合溶剂时,肽28才能高效获得。当使用DMF或乙腈作为共溶剂时,未检测到产物。因此,采用了Rink酰胺AM树脂,这是一种聚苯乙烯基载体,因其优越的可扩展性和操作性而被选用。基于固相光解离的效率,将外部光源整合到自动化肽合成仪中,实现了全自动SPPS。这一进步使得目标肽的直接生产成为可能,消除了传统自动化SPPS系统中手动TFA切割和额外后处理步骤的需求。采用该方法,通过6小时的光解实现了SPPS链延伸和全局去保护,直接在自动化肽合成仪中获得了目标产物。
生物活性肽(28−38)以优异的产率高效获得。特别是,合成了带有磷酸化修饰的酪氨酸激酶肽3(38),其分离产率达到了40%。这克服了磷酸肽生产中的一个持久性挑战,即需要通过TFA介导去除磷酸保护的苄基,这需要延长的去保护时间,常常导致肽片段化,并产生特征性的低产率。因此,这一策略为获得治疗性肽,甚至是那些对强酸敏感的肽,提供了一种更温和、自动化且便捷的途径。
Fmoc/tBu基SPPS策略革新了肽药物发现,并在过去20多年中一直未变。尽管其影响深远,但它存在固有局限性。在温和条件下光氧化还原断裂Pic基C-杂原子键有可能克服这些缺点。Pic基团的化学稳定性和易于获取,以及其在可见光下快速光解的能力,突显了其作为传统光笼的有用且独特的替代品的潜力。预计Fmoc/Pic SPPS策略将为制备具有挑战性的肽提供一种实用且有用的工具,适用于广泛的研究领域。
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